最新临床医学硕士毕业论文提纲

时间：2024-08-30 05:31:14 论文提纲我要投稿

最新临床医学硕士毕业论文提纲3篇

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最新临床医学硕士毕业论文提纲3篇

　　临床医学硕士毕业论文提纲篇一：

　　提要 4-5

　　中文摘要 5-7

　　Abstract 7-9

　　英文缩略词引表 10-14

　　第1章引言 14-16

　　第2章资料与方法 16-18

　　2.1 资料来源 16

　　2.2 文献纳入和排除标准 16

　　2.3 文献质量评价、筛选及统计学分析 16-17

　　2.3.1 纳入研究的质量评价 16-17

　　2.3.2 文献筛选和数据提取 17

　　2.3.3 统计学分析 17

　　2.4 敏感性分析 17

　　2.5 发表偏倚分析 17-18

　　第3章结果 18-25

　　3.1 纳入文献的一般情况 18-19

　　3.2 META分析结果 19-21

　　3.2.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分情况 193.2.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分情况 19-203.2.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的 Barthel 指数(BI)评分情况 20-213.3 敏感性分析 21-22

　　3.3.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分敏感性分析情况 213.3.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分敏感性分析情况 21-223.3.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的. Barthel 指数(BI)评分敏感性分析情况 223.4 纳入研究的发表偏倚分析 22-25

　　3.4.1 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的汉密尔顿抑郁量表(HAMD)评分发表偏倚分析情况 22-233.4.2 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的神经功能缺损程度评分量表(SSS)评分发表偏倚分析情况 233.4.3 氟西汀组和对照组治疗卒中后抑郁的 Barthel 指数(BI)评分发表偏倚分析情况 23-25第4章讨论 25-29

　　第5章结论 29-30

　　参考文献 30-33

　　综述 33-48

　　参考文献 43-48

　　附表 48-55

　　作者简介及在学期间所取得科研成果 55-56

　　致谢 56

　　临床医学硕士毕业论文提纲篇二：

　　摘要 4-11

　　Abstract 11-19

　　目录 20-22

　　符号说明 22-24

　　第一章 Profilin-1在AGEs诱导的内皮损伤中的作用 24-40

　　1 前言 24-26

　　2 材料与方法 26-33

　　2.1 材料 26-28

　　2.2 方法 28-33

　　3 结果 33-34

　　3.1 AGEs浓度对内皮细胞Profilin-1表达的影响 33

　　3.2 AGEs对内皮细胞Profilin-1表达的影响呈时间依耐性 33

　　3.3 AGEs对profilin-1mRNA表达的影响 33

　　3.4 AGEs对细胞上清液中NO、ADMA、ICAM-1水平的影响 33

　　3.5 AGEs对内皮细胞活性氧的影响 33-34

　　3.6 AGEs诱导的profilin-1对内皮细胞结构的异常 34

　　4 附图 34-38

　　5 讨论 38-39

　　6 结论 39-40

　　第二章 Profilin-1基因沉默后AGEs诱导的内皮细胞表达 40-66

　　1 前言 40-42

　　2 材料与方法 42-53

　　2.1 材料 42-45

　　2.2 方法 45-53

　　3 结果 53-56

　　3.1 Profilin-1 siRNA干扰对AGEs诱导的Profilin-1表达的影响 53

　　3.2 AGEs对细胞上清液中NO、ADMA、ICAM-1水平的影响 53

　　3.3 不同抑制剂对AGEs诱导内皮细胞的Profilin-1表达的影响 53-54

　　3.4 各种不同抑制剂对AGEs诱导内皮细胞的细胞因子的影响 54

　　3.5 AGEs以及各种抑制剂处理内皮细胞后对活性氧的影响 54

　　3.6 各种不同抑制剂对AGEs诱导的内皮细胞旳profiHn-l的表达，以及F -肌动蛋白分布的'影响 54-55

　　3.7 AGEs诱导的内皮细胞proiflin-l siRNA的表达以及F-actin分布的影响 55

　　3.8 PKC以及NF-κB通路与AGEs诱导的内皮细胞损伤的可能机制 55-56

　　4 附图 56-63

　　5 讨论 63-65

　　6 结论 65-66

　　第三章 AGEs介导的大鼠中profilin-1的表达 66-89

　　1 研究背景 66-67

　　2 材料与方法 67-79

　　2.1 材料与仪器 67-70

　　2.2 方法 70-79

　　3 结果 79-81

　　3.1 各组大鼠实验前体重情况比较 79

　　3.2 大鼠胸主动脉及肾脏组织切片光镜下苏木精-伊红(HE)染色观察以及免疫组化的改变 79-80

　　3.3 AGEs对胸主动脉内-中膜厚度(IMT)以及管腔(LD)的影响 80

　　3.4 大鼠胸主动脉血管profilin-1蛋白以及profilin-1 mRNA的表达 80

　　3.5 AGEs诱导的大鼠ICMA-1、ADMA以及NO水平的变化 80-81

　　4 附图 81-86

　　5 讨论 86-89

　　参考文献 89-95

　　综述 95-107

　　参考文献 102-107

　　在读期间发表的主要论文 107-108

　　致谢 108

　　临床医学硕士毕业论文提纲篇三：

　　摘要 4-7

　　Abstract 7-10

　　英文缩略词 11-12

　　目录 12-14

　　前言 14-16

　　第一章氧化应激模型的建立 16-29

　　引言 16-17

　　第一节实验方法 17-20

　　1 仪器与材料 17-18

　　2 N2a细胞的培养 18-19

　　3 氧化应激模型的建立 19-20

　　4 在光学显微镜下观察细胞之形态 20

　　第二节实验结果 20-26

　　1 不同浓度过氧化氢对N2a细胞作用相同时间的结果 20-24

　　3 80μM过氧化氢氧化损伤N2a细胞不同时间的形态变化 24-26

　　第三节讨论 26-28

　　第四节结论 28-29

　　第二章氧化应激状态下CDK1对caspase-2活性及高尔基体形态的.影响 29-51

　　引言 29-30

　　第一节实验方法 30-38

　　1 仪器与材料 30-31

　　2 N2a细胞培养 31

　　3 流式细胞术及Hoechst染色检测细胞凋亡情况 31-33

　　4 Western blot检测caspase-2的表达 33-36

　　5 分光光度法检测caspase-2活性 36-37

　　6 免疫荧光观察高尔基体形态 37-38

　　7 统计学分析 38

　　第二节实验结果 38-46

　　1 抑制CDK1活性对氧化应激中N2a细胞凋亡率的影响 38-40

　　2 Caspase-2的表达及活性的变化 40-41

　　3 免疫荧光观察高尔基体形态 41-45

　　4 Hoechst染色观察细胞核 45-46

　　第三节讨论 46-50

　　1 高尔基体应激 46

　　2 CDK1对氧化应激中N2a细胞损伤的影响 46-47

　　3 CDK1对高尔基体形态的影响 47

　　4 CDK1与caspase-2活性的关系 47-48

　　5 总结 48-50

　　第四节结论 50-51

　　参考文献 51-55

　　综述 55-61

　　参考文献 58-61

　　致谢 61-62

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