如何正确采集血培养标本

时间：2025-09-29 11:30:38 王娟检验技师/士

如何正确采集血培养标本

　　采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109/L，特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109/L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。下面是小编为大家带来的如何正确采集血培养标本的知识，欢迎阅读。

　　如何正确采集血培养标本1

　　什么情况下应该采集血培养?

　　采集血培养标本是有指征的，当患者体温超过38℃或低于36℃，患者寒战，查血常规白细胞计数大于10×109/L，特别有“核左移”未成熟或杆状核白细胞时，粒细胞减少、成熟的多核白细胞<1×109/L，血小板减少，患者出现皮肤黏膜出血、昏迷、休克或多器官衰竭，C反应蛋白升高，降钙素原升高等情况均应采集血培养标本。当然不能除外感染，需明确病原菌时，也要采集血培养。

　　采集血培养标本有最佳时间吗?

　　血培养标本是有最佳采集时间的，尽可能在患者寒战开始时、高热高峰前30-60分钟内采血，另外在患者接受抗生素治疗前采血，但如果患者已经应用抗菌药物进行治疗，应在下一次用药之前取血。

　　为什么使用需氧和厌氧瓶并采集两套呢?

　　需氧瓶、厌氧瓶标本同时取有助于提高阳性率，细菌包括需氧菌、厌氧菌和兼性厌氧菌。兼性厌氧菌不论在有氧或无氧环境中都能生长，但以无氧时生长较好，大多数病原菌属于此类。因此，建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出，但如果不能满足推荐的采血量时，应首先满足需氧瓶。成人患者一套血培养标本需取血20ml，需氧瓶、厌氧瓶各10ml，一套标本的检测灵敏度是73.2%，两套标本的检测灵敏度是93.9%，可见采集两套标本可以明显提高检测灵敏度，所以取两套标本还是很有必要的。值得注意的是，如果取两套标本要分别在两个穿刺点采血。

　　怎样规范的采集血培养标本呢?

　　第一步：手卫生。用皂液和流动水或含酒精的快速手消毒剂进行手卫生。

　　第二步：消毒瓶塞。用酒精纱布消毒培养瓶塞，充分待干。

　　第三步：皮肤消毒。范围直径不小于5厘米，消毒后不可再用手接触。

　　①先用70%-80%乙醇消毒不少于30秒。

　　②再用1%-2%碘酊消毒30秒或10%碘伏消毒60秒。

　　③再用70%-80%乙醇脱碘。

　　注意：对碘过敏的患者用70%-80%乙醇消毒2遍作用时间各3分钟，等酒精挥发干燥后采血。

　　第四步：采血。取血后不要更换针头直接注入血培养瓶。如果血量充足：先注厌氧瓶，后注需氧瓶，如果血量不足：优先注入需氧瓶，剩余注入厌氧瓶，因为真菌、绿脓杆菌、窄食单胞菌多长在需氧瓶内。

　　第五步：混匀。血培养标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固，不要大力摇晃。在每个培养瓶上分别标记采血部位和采血时间，注明是导管血还是外周血。

　　第六步：同法选择对侧穿刺部位采集第二套标本。

　　第七部：送检。血培养标本尽快送到实验室，任何的时间延误都会延迟或阻止检测细菌的生长。

　　注意：标本应从静脉取血，不宜从静脉导管或静脉留置口取血。若导管设施取血，不要弃去初段血，不用抗凝剂冲洗，必须同时静脉取血，以求对比和解释。不推荐使用真空采血针(蝴蝶针)将静脉血直接入瓶。不主张换针头入瓶。有血的培养瓶不可放入冰箱和冻箱保存。

　　未使用的血培养瓶在室温保存，被接种后不得冷藏或冷冻。

　　采集血培养标本需要严格无菌操作，但采集、送检、接种过程等仍然有可能有不可避免的污染，会不会有一些污染菌呢?

　　在多次血培养中单次培养下列细菌阳性，可认为是污染菌，包括凝固酶阴性葡萄球菌、棒状杆菌、微球菌、丙酸杆菌、芽孢杆菌。如多次血培养多次阳性，可能为条件致病菌，需要结合临床进行分析。

　　对于成人及青少年患者采集血培养标本的总体建议：

　　1.血流感染、脑膜炎、骨髓炎、关节炎、肺炎患者，在治疗前于不同部位采血2套或3套，同一部位需间隔30min-1小时，每套20ml，需氧、厌氧各10ml。

　　2.急性感染性心内膜炎患者，治疗前30分钟内采血3套。

　　3.亚急性感染性心内膜炎患者，治疗前第一天采血2-3套，间隔30-60分钟，如结果为阴性，第二天和第三天再抽取血培养，24小时内采血不超过4套。

　　4.导管相关性血流感染患者，采集2套血培养，1套从怀疑存在感染的导管获得，一套从外周获得，两套血同时采集。可先取外周血，5分钟内完成对导管血的采集。拔除导管时送导管尖端培养，并采集血培养标本。

　　如何正确采集血培养标本2

　　正确抽取血培养是诊断血流感染的关键步骤，需要严格遵循无菌操作和标准化流程。

　　血培养是检测血液中是否存在病原微生物的重要方法，对于感染性疾病的诊断和治疗具有重要意义。为确保血培养的准确性和可靠性，医务人员需熟练掌握正确的抽取方法。

　　一、准备工作

　　在进行血培养前，应对患者的皮肤进行严格消毒，避免皮肤表面细菌污染血液样本。同时，选择合适的采血部位，通常选择静脉血管较明显、易于穿刺的部位。

　　二、采血过程

　　1、穿刺技术：采用无菌技术进行穿刺，确保采血针和采血管的无菌状态。穿刺时应尽量减少组织损伤，以降低污染风险。

　　2、血量与瓶数：根据患者的具体情况和采血目的，确定合理的采血量和瓶数。一般来说，成人每瓶采血量为5-10ml，儿童则根据体重适量减少。

　　三、注意事项

　　在采血前，若患者正在接受抗菌药物治疗，如青霉素、头孢菌素或氟喹诺酮类药物，医务人员应了解这些药物对血培养结果可能产生的影响。同时，应记录患者用药情况，以便后续分析。

　　四、特殊情况处理

　　在采血过程中，如遇患者血流不畅、采血困难等特殊情况，医务人员应灵活调整采血策略，如更换穿刺部位、调整采血针型号等，以确保血液样本的质量。

　　五、后续操作

　　采血完成后，应按规定流程将血培养瓶送至实验室，确保样本在适宜的温度和时间内进行处理和分析。实验室人员接收到样本后，也应严格遵守操作规程，以确保检测结果的准确性。

　　如何正确采集血培养标本3

　　对于怀疑微生物感染的高热病人，在准备使用抗菌素治疗之前，按照抗菌药物的使用要求，通常需要进行血培养检查。

　　体温超过38.5℃以上的病人，在畏寒、寒战时抽血最佳，要求取血间隔为1小时以上，共取3次，每次尽量从不同部位取血，一般要在应用抗生素之前取血，每次需氧、厌氧各取一瓶，每瓶5-8毫升。

　　怀疑真菌或特殊病原体感染者，需与细菌室联系后采血，对已经应用抗生素的病人，如果情况允许，可停药24到48小时后取血，也可使用含活性炭的培养瓶。

　　采血培养标本需严格按照无菌操作，标本应从静脉取血，不宜从静脉导管或静脉留置口取血。若导管设施取血，不要弃去初段血，不得用抗凝剂冲洗，必须同时静脉取血，以求对比和解释。

　　不推荐使用真空采血针将静脉血直接入瓶，不主张换针头入瓶。未使用的血培养瓶在室温保存，被接种后不得冷藏或冷冻。

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